Coleópteros de pequenas dimensões

Coleópteros de pequenas dimensões

1. Identificação

• Nome comum: Diversos (Ver fichas individuais das espécies)
• Nome científico: Diversas espécies de várias famílias de Coleoptera (ver ponto 3.)
• Principais famílias: Nitidulidae, Curculionidae, Chrysomelidae, Bostrichidae, Scolytinae, Buprestidae, Scarabaeidae
• Ordem: Coleoptera

2. Descrição geral

• Insetos de reduzidas dimensões, geralmente inferiores a 1 cm.
• Adultos ativos, com grande mobilidade e capacidade de dispersão.
• Larvas podem ser fitófagas, minadoras, perfuradoras ou alimentarem‑se de tecidos superficiais.
• Muitas espécies atuam como pragas secundárias, mas podem causar danos significativos em condições favoráveis.

3. Hospedeiros principais

• Agrilus spp. – Diversas folhosas e fruteiras; larvas minadoras de madeira.
• Agriotes spp. – Diversas culturas; larvas (alfaiates) atacam raízes e tubérculos.
• Altica ampelophaga (Guérin‑Méneville) – Videira.
• Aphanisticus emarginatus (Olivier) – Videira (larvas minadoras de sarmentos).
• Byturus spp. – Pequenos frutos, especialmente framboesa e amora.
• Carpophilus freemani (Dobson) – Frutos sobremaduros, citrinos, figueira, vinha e frutos de caroço.
• Carpophilus hemipterus (Linnaeus) – Frutos maduros ou danificados de citrinos, figueira, vinha e fruteiras diversas.
• Carpophilus mutilatus (Erichson) – Frutos em decomposição, citrinos, figueira, vinha e pequenos frutos.
• Cneorhinus serranoi (Germain) – Diversas ornamentais e fruteiras.
• Cosmopolites sordidus (Germar) – Bananeira (Musa spp.).
• Crioceris asparagi (Linnaeus) – Espargo.
• Crioceris duodecimpunctata (Linnaeus) – Espargo.
• Exomala (=Anomala) orientalis (Waterhouse) – Diversas culturas; larvas rizófagas.
• Halyomorpha halys (Stål) – Polífaga; fruteiras, hortícolas e ornamentais.
• Hylastinus obscurus (Marsham) – Trevo e leguminosas forrageiras.
• Hypothenemus eruditus (Westwood) – Diversas espécies lenhosas, sobretudo madeira debilitada.
• Hypothenemus hampei (Ferrari) – Cafeeiro (broca do café).
• Ips acuminatus (Gyllenhal) – Pinheiro.
• Ips cembrae (Heer) – Larício e outras coníferas.
• Ips sexdentatus (Boisduval) – Pinus spp.
• Ips typographus (Linnaeus) – Picea spp.
• Oulema melanopus (Linnaeus) – Cereais, especialmente trigo e cevada.
• Phyllotreta spp. – Brassicáceas (couve, nabo, rabanete).
• Pityophthorus juglandis (Blackman) – Nogueira.
• Platypus cylindrus (Fabricius) – Carvalho e outras folhosas; perfurador de troncos debilitados.
• Popillia japonica (Newman) – Diversas culturas; adultos polífagos; larvas rizófagas em relvados e prados.
• Pyrrhalta (=Xanthogaleruca) luteola (Müller) – Ulmeiro.
• Scolytus amygdali (Gerstäcker) – Amendoeira e outras Prunóideas.
• Scolytus multistriatus (Marsham) – Ulmeiros.
• Sitophilus granarius (Linnaeus) – Trigo e outros cereais armazenados.
• Sitophilus oryzae (Linnaeus) – Arroz, milho e cereais armazenados.
• Xyleborus dispar (Fabricius) – Pomóideas e outras folhosas; perfurador de troncos.

4. Sintomas e danos

• Perfurações superficiais em frutos, folhas ou caules.
• Danos em frutos maduros ou feridos, favorecendo podridões secundárias.
• Perfurações em sementes ou grãos armazenados, com perdas de peso e qualidade.
• Minagens em folhas ou caules, provocando necroses e redução da área fotossintética.
• Declínio de plantas jovens em ataques ao colo ou raízes.

5. Ciclo biológico

• Ciclos geralmente curtos, com várias gerações anuais ou 1 única geração anual (variável em função da espécie).
• Desenvolvimento favorecido por temperaturas elevadas e elevada disponibilidade de alimento.
• Adultos procuram frutos maduros, tecidos tenros ou material armazenado para postura.
• Larvas desenvolvem‑se no interior do alimento, protegidas de fatores externos.

6. Monitorização

• Inspeção visual de frutos maduros, folhas e caules.
• Observação de perfurações, galerias superficiais ou minagens.
• Armadilhas alimentares ou feromonais para espécies como Carpophilus spp.
• Monitorização regular de armazéns e silos para deteção precoce de infestação.

7. Medidas de gestão

• Culturais: Incluem práticas que reduzem a disponibilidade de alimento e locais de reprodução. A remoção de frutos caídos ou danificados, a colheita atempada e a eliminação de restos vegetais diminuem a atratividade para espécies como Carpophilus spp. A manutenção de armazéns limpos, secos e bem ventilados reduz o risco de infestação por coleópteros de produtos armazenados. Em culturas de campo, a rotação de culturas, a eliminação de infestantes e a manutenção do vigor das plantas ajudam a reduzir a suscetibilidade.
• Biológicas: Baseiam‑se na ação de inimigos naturais presentes no agroecossistema, incluindo parasitoides de ovos e larvas, predadores generalistas e entomopatógenos como Beauveria bassiana e Metarhizium anisopliae, eficazes em várias espécies de pequenas dimensões. Em armazéns, o uso de insetos benéficos específicos para controlo biológico de pragas de grão pode ser integrado em programas de gestão. A preservação destes agentes exige evitar inseticidas de largo espectro e manter condições favoráveis à sua atividade.
• Proteção integrada: Assentam na monitorização regular e na intervenção seletiva. O uso de armadilhas alimentares ou feromonais permite detetar e reduzir populações de Carpophilus spp. e outras espécies. Os tratamentos devem ser dirigidos aos períodos de maior atividade dos adultos, utilizando substâncias seletivas e compatíveis com a fauna auxiliar. Em armazéns, a aplicação de boas práticas de higiene, a ventilação adequada e o controlo da humidade são fundamentais. A integração de medidas culturais, biológicas e monitorização contínua permite manter as populações abaixo do limiar de dano.

Referências bibliográficas

• EPPO Global Database – Carpophilus spp., Hypothenemus spp., Sitophilus spp., Altica spp., Scolytus spp., Ips spp., Xyleborus dispar, Agrilus spp.
• CABI Invasive Species Compendium – Diversas espécies de coleópteros de pequenas dimensões.
• EFSA Panel on Plant Health – Pest categorisation reports para Popillia japonica, Ips typographus, Ips sexdentatus, Xyleborus dispar, Pityophthorus juglandis (2017–2023).
• USDA Forest Service – Forest Insect & Disease Leaflets (Scolytinae e Buprestidae) (edições 2015–2022).
• Rees, D. (2004). Insects of Stored Products.
• Vega, F.E. et al. (2009). The coffee berry borer: biology and control.
• Potter, D.A. (1998). Japanese beetle biology and management.
• Haack, R.A. (2006). Global spread of wood‑boring beetles via international trade.
• Jolivet, P. (1988). Biology of Chrysomelidae.
• Wood, S.L. & Bright, D.E. (1992). A Catalog of Scolytidae and Platypodidae.